1. 세포주 및 세포배양
실험에 사용한 B16/F10 세포는 한국세포주은행 (KTCC, Seoul, Korea)에서 분양 받았으며, 100 units/ml penicilin/streptomycin과 10% fetal bovine serum (FBS)이 함유된 Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) (Gibco, USA) 배지를 사용하여 37℃, 5% CO2 인큐베이터에서 배양하였다.
3. MTT assay
B16/F10 세포를 5x105cells/ml로 96 well에 분주하고 24시간 동안 안정화 시킨다. 시료를 농도별로 처리하고 24시간 동안 CO2 배양기에 배양하였다. 배양 후 3-(4,5-Dimethylithiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide (MTT, 0.5 mg/ml) (Sigma, USA) 용액을 처리하고 4시간 동안 CO2 배양한 후 DMSO를 넣고 30분동안 37℃에서 방치한 후 540 nm 파장에서 마이크로 스펙트로 포토미터(Molecular Device, Sunnyvale, CA, USA)로 분석하였다.
4. Tyrosinase 저해 활성 측정
시료의 tyrosinase 저해 활성 효과는 L-DAPA를 이용하여 확인하였다. 10 mM L-3,4-dihydroxyphenylalanine(L-DOPA) (Sigma, USA) 를 sodium phosphate buffer (0.1M pH6.8)에 희석하여 실험에 사용하였고, mushroom tyrosinase (Sigma, USA)는 40 unit/mL의 농도로 사용하였다. 시료를 10, 100, 500, 1000 μg/mL로 sodium phosphate buffer에 희석하여 96well plate에 60 μL씩 넣고, 여기에 L-DAPA 20 μL와 mushroom tyrosinase 20 μL를 첨가하여 37℃에서 10분간 반응시켜 반응액 중에 생성된 DOPA chrome을 492 nm 파장에서 마이크로 스펙트로 포토미터(Molecular Device, Sunnyvale, CA, USA)로 측정하였다. 대조군으로는 시료 대신 증류수를 넣어 효소의 활성을 측정 하였다.
Tyrosinase 저해율 (%) ={1-(S-B)/C}X 100
S: 효소액 및 시료용액 첨가 흡광도
B: 효소액 대신 buffer 첨가 흡광도
C: 시료용액 대신 buffer첨가 흡광도
5. RT-PCR
B16F10 세포를 6 well plate에 5×105cells/ml 분주한 후 배양한다. 24시간 후 시료를 1시간 동안 처리하고 α-melanocyte stimulating hormone(α-MSH) (Sigma, USA) 를 넣어준 후 24시간 배양한다. Trizol_ Reagent (Life Technologies, Carlsbad, CA, USA) 을 사용하여 mRNA를 추출한 후 PrimeScript_ RT reagent kit (TaKaRa, Shiga, Japan)를 이용하여 cDNA를 합성하였다. PCR 증폭을 위하여 PCR-PreMix (Bioneer, Korea)를 사용하였다. 95℃에서 30초, 62℃에서 30초, 72℃에서 30초로 모두 26 cycle 반복하였고, 1% agarose gel에서 전기영동 하였다. PCR에 사용된 primer 는 Tabel1과 같다.
Table 1. Oligonucleotide primers used for PCR in this study.
Target gene | PCR primer sequence(5' to 3') | Expected size | |
mTRP1 | sense | TGG GAA AAA CGT CTG CGA TG | 263bp |
antisense | CAC GGA CCT CCA AGC ACT GA | ||
mTRP2(F) | sense | GCC CCG ACT GTA ATC GGA AG | 410bp |
antisense | CTT CCC GGT TGC AAA GTT CC | ||
mGAPDH (F) | sense | TGA CCA CAG TCC ATG CCA TC | 493bp |
antisense | TTA CTC CTT GGA GGC CAT GT |
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